Разработка биотехнологического приема и отбора по признаку высокой, генетически детерминированной устойчивости организма к стрессу

Development of biotechnological reception and selection by the sign of the high, genetically determinated stability of the organism to stress


УДК 612.017.1:636

17.05.2017
 192

Выходные сведения:
Ахмадиев Г.М. Разработка биотехнологического приема и отбора по признаку высокой, генетически детерминированной устойчивости организма к стрессу // Аэкономика: экономика и сельское хозяйство, 2017. №5 (17). URL: http://aeconomy.ru/science/agro/razrabotka-biotekhnologicheskogo-pr/

Авторы:
Ахмадиев Г.М., доктор ветеринарных наук, профессор кафедры химии и экологии Казанский (Приволжский) федеральный университет, Набережночелнинский институт (филиал)
GMAhmadiev@kpfu.ru ,ahmadievgm@mail.ru



Authors:
Akhmadiev G.M. Doctor of Veterinary Sciences, Professor of the Department of Chemistry and EcologyKazan (Privolzhsky) Federal University, Naberezhnye Chelny Institute (branch)
GMAhmadiev@kpfu.ru, ahmadievgm @ mail.ru

Ключевые слова:
разработка, биотехнологический прием, катон, отбор, признак, высокий, устойчивость, организм, стресс

Keyword:
development, biotechnological reception, cat, selection, sign, high, stability, organism, stress

Аннотация: 
В настоящее время важное место в профилактике стрессов занимают создание типов животных с высоким адаптивным потенциалом и селекция их по стрессустойчивости. Повышение жизнеспособности человека и животных – главная цель науки.

С учетом поставленной цели и задач исследований и особенностей изучаемого явления использовали комплекс иммунологических, физиологических, биохимических и гематологических методов исследований.

Сущность способа повышения неспецифической резистентности у овец в системе мать-плод-новорожденный заключается в том, что овцематки со второй половины суягности за 10 дней до родов круглосуточно содержали в умеренных минусовых температурных условиях. Для чего и использовали катон (устройство) нашей модификации.

У ягнят, полученных от овцематок, содержащихся в катонах нашей модификации, стрессрезистентность организма была выше, чем у молодняка, полученного от животных, которые содержались кошарно-базовым способом.

Annotation: 
Currently, the creation of types of animals with a high adaptive potential and their selection for stress resistance occupy an important place in the prevention of stress. Increasing the viability of humans and animals is the main goal of science.

    Taking into account the goal and tasks of the research and the features of the phenomenon studied, a complex of immunological, physiological, biochemical and hematological methods of research was used.

   The essence of the method for increasing non-specific resistance in sheep in the mother-fetus-newborn system is that the ewes from the second half of the pregnancy 10 days before delivery were kept in moderate minus temperature conditions around the clock. For this, we used the cat (device) of our modification.

In the lambs obtained from the ewes contained in the cathines of our modification, the stress resistance of the organism was higher than in the young animals obtained from animals that were kept in a cochlear-base method.


Разработка биотехнологического приема  и отбора по признаку высокой, генетически детерминированной устойчивости организма к стрессу


Введение  

Особо важное место в профилактике стрессов занимают создание типов животных с высоким адаптивным потенциалом и селекция их по стрессустойчивости. Повышение жизнеспособности человека и животных – главная цель науки [6, 21, 24, 25, 26, 27]. На жизнеспособность человека оказывают влияние и генетические процессы в популяции, прежде всего, повышенная скорость обновления генома (повышенная гетерозиготность). Она обусловлена смешением популяционных генофондов, происходящим в результате многонационального состава населения и обширности территории страны, способствующей возникновению региональных отличий генотипа даже внутри одной и той же этнической группы. Повышенная гетерозиготность генома обостряет иммунологический конфликт между организмом беременной женщины и плодом и при недостаточном питании приводит к развитию у беременной железодефицитной анемий, отставанию в развитии плода, повышению репродуктивных потерь, и ухудшению здоровья детей [23, 28, 31]. Созданные цивилизацией и научно-техническим прогрессом гиподинамия (снижение силовых нагрузок) и гипокинезия (ограничение двигательной активности) не только отрицательно влияют на системы кровообращения, дыхания, обмен веществ, опорно-двигательный аппарат, нервные и гуморальные регуляторные механизмы, но и непременно ведут к снижению реактивности организма и развитию стресса, ростом, так называемых болезней стресса [28].

Селекция и отбор по признаку высокой, генетически детерминированной устойчивости организма к стрессу - наиболее важные пути совершенствования сельскохозяйственных животных, пригодных к требованиям интенсивной технологии в экологическом отношении неблагополучных регионах страны.

В настоящее время известны способы определения стрессустойчивости и стрессчувствительности и они еще не достаточно отработаны, трудоемки и требуют определенных условий. Необходимы дальнейшие поиски более простых, надежных и объективных способов оценки чувствительности животных к воздействию стресс-факторов, широкие исследования по использованию этих методов в селекционной работе, направленной на выведение стрессустойчивых пород, линий, гибридов, отличающихся высокой жизнеспособностью и продуктивностью и дающих в экологическом отношении качественную продукцию [1, 2, 3, 4, 5].

Известен способ поддержания физиологического статуса новорожденных телят, который  связан с применением неспецифических средств, впервые дни жизни для  коррекции физиологических процессов в пищеварительной системе [9].

В отечественной науке известен способ коррекции иммунологического статуса новорожденных животных в ранние периоды постнатального онтогенеза [15].

Мы считаем, что  нужна такая  технология поддержания физиологии беременности до рождения, которая предупреждает развитие  различных патологии и стресса новорожденных животных.  Однако, при этом  для совершенства терморегуляторных и иммунобиологических процессов будущего потомства млекопитающих должен быть комплексный подход, по нашему мнению надо использовать и природные естественные технологические приемы в период беременности, начиная  со второй половины, когда начинается интенсивный рост и развитие плода. Результаты     воздействия природных факторов окружающей воздушной среды  на беременных животных в первую очередь отражаются в клетках периферической   систем крови. Поэтому для изучения и определения состояния защитных иммунных клеток, надо использовать  периферическую  систему крови, которая находится  в зависимости от периферических рецепторных аппаратов нервной системы.  Выбор системы крови новорожденных животных в качестве объекта исследования был не случаен, поскольку кровь чутко реагирует на различные воздействия  экологических факторов окружающей среды. Новорожденные животные  впервые часы жизни, подвергается воздействию различных факторов внешней среды [9, 10, 11]. Интерес к системе крови определяется еще тем, что именно данная система представляет собой внутреннюю среду, которая играет решающую роль в неспецифических и специфических реакциях защиты новорожденного и взрослого организма, влияя на его естественную резистентность и иммунобиологическую реактивность. При этом  естественные факторы окружающей среды,  способствуют к  формированию терморегуляторных и иммунобиологических механизмов, начиная со второй половины  беременности, включая и  желез внутренней секреции, т.е. гормональную систему  [1-14, 20, 21, 22]. Стресс вызывает атрофию дендритов гиппокампа CA3 пирамидальных нейронов. Гиппокамп уязвим для разрушительных действий оскорбления в виде различных раздражителей (стрессов) , такие как преходящей ишемии и ритмической стимуляции, а также повторное воздействие экзогенных глюкокортикоидов. Это исследование последствий повторного психологического стресса, сдержанность, на CA3 пирамидальные нейроны, которые уязвимы для повреждений ритмической стимуляции. Повторные ежедневного стресса сдержанность в течение 21 дней вызвал апикальных дендритов пирамидальных нейронов CA3 к атрофии, а базальные дендриты CA3 не изменилась. Крысы, которые прошли лечение и от этого были здоровы и показали некоторые адаптации глюкокортикоидной реакции на стресс в течение 21 дней, однако стресс уменьшить веса тела на 14% и увеличение веса надпочечников относительно веса тела на 20%. Результаты обсуждаются в связи с возможной роли надпочечников стероидов и возбуждающих аминокислот [20, 29, 32].

Материал и методы исследований

С учетом поставленной  цели и задач исследований и особенностей изучаемого явления использовали комплекс иммунологических, физиологических, биохимических и гематологических методов исследований.

Стрессреактивность животных устанавливалась путем постановки:

адреналиновой пробы с предварительным смешиванием периферической крови с 0,1% раствором адреналина гидрохлорида и с 1%ным водным раствором метилрозацилина или металвиолета, а ее исследование проводилось через 30, 60 и 120 минут путем подсчета неразрушенных форм лейкоцитов в камере Горяева и норадреналиновой пробы, для этого в две пробирки вносили по 0,1 мл. периферической крови животного.

В первую пробирку (опытную) добавляли 0,9 мл. 0,2% раствора норадреналина гидротартрата, а во вторую (контрольную) 0,9 мл. стерильного физиологического раствора. Пробы тщательно перемешивали и помещали в термостат на 2 часа при температуре 37,5˚ С. После инкубирования через 2 часа для подсчета неразрушенных форм мононуклеаров брали взвеси из опытной и контрольной проб и готовили мазки. Мазки окрашивали по методу Паппенгейма. Для чего сухие нефиксированные мазки помещали в контейнер и опускали в кювету с раствором красителя-фиксатора Май - Грюнвальда на 5 минут, после чего контейнер с мазками ополаскивали в кювете с дистиллированной водой и помещали в кювету с рабочим раствором азур-эозина (по Нохту) на 8-15 минут. Затем сливали краску, перенося кювету с водопроводной водой. Мазки высушивали на воздухе. Подсчет неразрушенных мононуклеаров (лейкоцитов) проводили в тонкой части мазка, где эритроциты лежат одиночно. Для нахождения процента разрушенных мононуклеаров крови животного под действием 0,2% раствора норадреналина гидротартрата использовали формулу:

 

ПСРМ = · 100;

Где ПСРМ – показатель стрессрезистентности мононуклеаров; М – мононуклеары.

Состояние естественной резистентности оценивалось по показателям опсонофагоцитарной реакции (В.С. Гостев, 1951); лизоцимной активности сыворотки крови (В.Г. Дорофейчук, 1963); титру гетерогемагглютининов.

Для определения стресс-реакции брали кровь и выявляли состояние стресса в аппарате Панченкова. Затем в пипетку набирали 0,1% раствор адреналина гидрохлорида, доведенный до изотонической концентрации хлористым натрием, до метки Р и выливали на часовое стекло. После этого пипетку прополаскивали раствором гепарина до метки Р и той же пипеткой набирали кровь у животного до метки К и выливали на часовое стекло в раствор адреналина гидрохлорида. Кровь и раствор адреналина гидрохлорида перемешивали концом пипетки и наполняли эту же пипетку адреналиногидрохлоридной кровью до метки О и ставили в штатив. Аналогичным образом ставили контрольные пробы с изотоническим раствором хлористого натрия содержащий 0,01 н. раствор соляной кислоты. Исходя из того, что раствор адреналина гидрохлорида содержит 0,01 н. раствор соляной кислоты, в контрольную пробу добавляли 0,01 н. раствор соляной кислоты. РН 0,1% раствора адреналина гидрохлорида и изотонического раствора хлористого натрия после добавления 0,01 н. раствора соляной кислоты имели одинаковые величины.

Результаты стресс-реакции организма животных в опытных и контрольных пробах определяли по скорости оседания эритроцитов через 15 минут. Учет осуществляли визуально. Состояние стресса констатировали в том случае, когда разница скорости оседания эритроцитов в опытной и контрольной пробах составляла 0,3 мм и выше. Стресс-реакции с определением скорости оседания эритроцитов периферической крови в 0,1% растворе адреналина гидрохлорида в аппарате Т.Н. Панченкова за 15 минут.

Биохимические методы применяли при определении белковой картины крови. Общий белок определяли рефрактометрически; а белковые фракции – электрофорезом в теле агара (П.Грабар, П. Буртен, 1963). Количество общего кальция в сыворотке комплексонометрически. Неорганический фосфор в сыворотке крови – по Бриггсу в модификации С.И. Ивановского /1972/. Резервную щелочность в плазме крови – по Ван-Сляйку (1969).

Гематологические методы применялись для определения количества эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, скорости оседания эритроцитов, бляшкообразующих клеток и розеткообразующих лейкоцитов крови. Содержание эритроцитов и концентрацию гемоглобина определяли фотоэлектроколометрическим методом (Г.В. Дервиз, А.И. Воробьева, 1959). Лейкоциты подсчитывали в счетной камере, скорость оседания эритроцитов – в аппарате Т.Н. Панченкова. Количество аутоиммунных бляшкообразующих клеток определяли по методике Н.Н. Клемнарской (1978). Аутоиммунные розеткообразующие клетки в мазках крови животных, окрашенных по Романовскому-Гимза, обнаруживали путем подсчета 100 клеток в двух продольных полосках мазка. Дифференциальный подсчет лейкоцитов проводился в мазках, окрашенных по методу Романовского-Гимза.

В качестве показателей уровня морфо-функционального развития новорожденных животных использовали живую массу, размеры, тип телосложения, проявления врожденных рефлексов, клинические показатели (частота пульса и дыхания). Об интенсивности роста и развития молодняка жвачных животных судили по абсолютному приросту и среднесуточному приросту.

В качестве объекта исследования и  определения стрессчувствительности новорожденных животных использовали периферическую кровь из пуповины и яремной вены.

Для определения стрессчувствительности в две пробирки вносили по 0,1 мл крови новорожденного животного. В первую пробирку (опытную) добавляли 0,9 мл 0,1% раствора адреналина гидрохлорида, а во вторую (контрольную) - 0,9 мл. стерильного физиологического раствора. Пробы тщательно перемешивали и ставили в термостат на 30, 60, 120 минут при температуре 37,5˚ С. После инкубирования через 30, 60, 120 минут перед каждым очередным подсчетом брали 0,1 мл. взвеси с опытной и контрольной проб и смешивали с 0,1 мл. 1% раствором водного метилрозацилина или метилвиолета той же концентрации и объема. Затем содержимым обеих проб заполняли камеру Горяева и подсчитывали количество лейкоцитов в 25 больших квадратах по обычной методике, принятой для подсчетов. Для нахождения процента разрушенных лейкоцитов новорожденного животного под воздействием 0,1% раствора адреналина гидрохлорида использовали формулу:

 

ПЧСЛ =  · 100%

где ПЧСЛ – показатель стрессчувствительности лейкоцитов, Л – лейкоциты.

Результаты исследований 

Экспериментальные и производственные исследования проводились на овцах породы прекос. Для исследования созданы две группы животных (опытная и контрольная), в каждой 400 овцематок. Первая группа овцематок со второй половины суягности (опытная) содержалась в зимне-весенний период на открытой площадке круглосуточно на глубокой соломенной подстилке, а вторая группа (контрольная) в помещении и на выгульной площадке – кошарно-базовым способом. По мере получения ягнят аналогично создавали две группы животных. От опытных овцематок было получено 342 ягненка, а от контрольных 318.

Рацион для овцематок и их ягнят составлялся по нормам ВИЖа, одинаково по каждой группе.

Новорожденных ягнят из каждой группы из 10 животных, оценивали по показателям физиологической зрелости с учетом температуры тела первые 8 часов и по живой массе тела.

В дальнейшем, через 30, 60, 90 дней после рождения, изучали у ягнят физиологические и биохимические показатели крови, кроме того, учитывали рост и развитие. Кровь для физиологического и биохимического исследования у ягнят брали из яремной вены в утренние часы до кормления.

Для изучения у овец взаимоотношения между поведенческими реакциями и особенностями специфического и неспецифического реагирования на длительное действие холода, овцематок за 10 дней до окота в зимне-весенний период содержали, при отрицательной температуре на выгульной площадке. До и после 9-недельной холодовой экспозиции определяли стрессчувствительность животных и параметры поведенческих реакций. Интервал между этими исследованиями составлял 6-7 дней. Для оценки гематологической функции у овцематок в утренние часы до кормления брали кровь из яремной вены за 10 дней до холодового воздействия и через 15, 30, 60 дней после перевода животных на выгульную площадку [30].

Предназначенные для исследования животные были клинически здоровыми, одного возраста, пола и массы. Они находились в одинаковом физиологическом состоянии. Животные были средней упитанности. Перед началом исследований животные подвергались клиническому осмотру и термометрии тела в течение 3 дней. До начала исследования все подопытные животные предварительно были пронумерованы. В период проведения исследований соблюдались зоогигиенические, зоотехнические и ветеринарные требования за уходом, содержанием и кормлением животных.

Изменения живой массы у животных учитывали по данным ежемесячных взвешиваний. Одновременно определяли микроклимат помещений, где находились животные. Кроме того, учитывали заболеваемость и падеж животных.

Статистическую обработку проводили методом вариационной статистики по Н.А. Плохинскому (1961). Весь цифровой материал обработали статистическими методами на калькуляторе «Электроника МК-56». Достоверность различия определяли по таблице Стьюдента

Одним из факторов повышения устойчивости животных является использование резервов самого организма. Для этого необходима оптимизация физиологических функций. Принципы и способы оптимизации физиологических функций организма жвачных животных к условиям различных регионов России и  Ближнего Зарубежья в зимне-весенний период года не разработаны.

Исходя из вышеизложенного, нами был разработан способ повышения неспецифической естественной  резистентности у овец в системе мать-плод-новорожденный.

Сущность способа повышения неспецифической резистентности у овец в системе мать-плод-новорожденный заключается в том, что овцематки со второй половины суягности за 10 дней до родов круглосуточно содержали в умеренных минусовых температурных условиях. Для чего и использовали катон (устройство) нашей модификации. Катон включает щитки-решетки с кормушками – 1,5; вентиляционное отверстие –2, ворота –3, основание –4. Катон отличается от известных технических решений тем, что с целью повышения эффективности и упрощения способа, устройство (катон) выполнено разборным и с кормушками укреплениями неподвижно на щитах (рис.). Изучение возрастных особенностей жизнеспособности ягнят является важным вопросом катонно-стойлового содержания их в условиях Казахстана. Для изучения этого вопроса нами поставлен опыт на грубошерстных, мясосальных овцематках, выращенных в катонах нашей модификации и кошаре, со второй половины суягности за 10 дней до родов, с целью выявления влияния разных условий содержания на резистентность потомства.


Первая группа (контрольная) в зиму  находилась в кошаре-отаре овцематок (582 головы), где на одно животное приходилось 0,25 м2 площади. Вторую (опытную) группу содержали в другой отаре овцематок (622 головы) в полузакрытом катоне. Катон сооружался на выгульной площадке, которая состоит из щитов-решеток высотой 4 м. Снаружи решетки обкладывали толстым слоем соломы. Сверху оставляли вентиляционное отверстие диаметром до 2 м. Сбоку устаивали ворота размером: высота 2,5 м., ширина 3 м. Основание катона прилегает на глубокую соломенную подстилку и имеет 16 метровую ширину.

Рацион кормления для овцематок двух отар был одинаковым. На протяжении опыта животные получали дополнительное сено, солому, концентраты, поваренную соль.

Различные условия содержания овцематок и длительное воздействие низкой температуры отразилось на физиологическом состоянии и морфологическом составе крови, полученных от них ягнят.

Температура тела у всех подопытных ягнят находилась в пределах физиологической нормы и имела достоверные различия (Р<0.05).

Количество ударов пульса у всех овцематок снижалось, но в 120 дневном возрасте отмечено некоторое его увеличение, как следствие повышения температуры атмосферного воздуха. Однако частота пульса у животных по группам была не одинакова. Так, у животных, полученных от овцематок, которые содержались кошарно-базовым способом при рождении показатели первой группы были ниже, чем у ягнят второй группы, полученных от овцематок, которые содержались в катоне нашей модификации.

После перевода ягнят в сакманное отделение, где температура воздуха была ниже, чем в цехе ягнения, частота дыхания заметно изменилась: отмечено самое редкое дыхание, которое у ягнят первой и второй групп соответственно на 34.5 и 42.1% (Р<0.001) по сравнению с данными ягнят в недельном возрасте.

Следовательно, частота дыхания у ягнят обоих групп коррелировала с показателями температуры помещения и внешней среды.

Количество эритроцитов в крови ягнят в обеих группах к 30 дневному возрасту повысилось на 57.6 ( Р<0.001), в 60 дневном возрасте снизилось на 30,7% /(Р<0.001) с последующим постепенным увеличением их к 90-дневному возрасту на 9,5% (Р<0.001).

Результаты исследования показывают, что количество эритроцитов в крови ягнят в ранние периоды постнатального онтогенеза непостоянно и имеет тенденцию к периодическому спаду и нарастанию.

Содержание лейкоцитов в крови ягнят с возрастом значительно изменилось. У животных обеих групп наибольшее количество их отмечалось в 30 дневном возрасте, которое постепенно снижалось к 90 дневному возрасту.

Лизоцимная активность сыворотки крови во все возрастные периоды коррелировала с ростом ягнят.

Фагоцитарная активность нейтрофилов у подопытных ягнят в 60 дневном возрасте составляла в пределах 57-65%, увеличение фагоцитоза отмечено в последующие возрастные периоды.

Заключение

Таким образом, у ягнят, полученных от овцематок, содержащихся в катонах нашей модификации, стрессрезистентность организма была выше, чем у молодняка, полученного от животных, которые содержались кошарно-базовым способом.


Библиографический список


1.А.с. 1718826, СССР, МКИ А 61 В 10/00. Способ определения стрессчувствительности новорожденных животных / Ахмадиев Г.М.; - № 4762838/15 – 4615 – Заявлено 22. 11. 89 ; Опубл. Б.И., 1992, № 10.
2.А.с. 173227, СССР, МКИ G 01 33/53. Способ определения совместимости животных при трансплантации/ Ахмадиев Г.М., Амансугуров А.Г.; - № 4834220/14 – 045815 – Заявлено 20. 04. 9 0; Опубл. Б.И., 1992, № 17.
3.А.с. 1755412, СССР, МКИ А 01 К 67/02 G 02 33/49. Способ прогнозирования жизнеспособности новорожденных ягнят/ Ахмадиев Г.М.; - № 4780705/15 – 04615 – Заявлено 09. 01. 90 . Не публикуется.
4.А.с. 1802339, СССР, МКИ G 01 33/74. Способ определения послеродового стресса у овец и устройство для определения скорости оседания эритроцитов / Ахмадиев Г.М., Гатин Г.Г.; - № 4780347/14 – 24881 – Заявлено 09. 01. 90 ; Опубл. Б.И., 1993, № 10.
5.Ахмадиев Г.М. Оценка и прогнозирование жизнеспособности новорожденных животных в зависимости от послеродового стресса. –Автореф. дисс. докт. вет. наук.- Казань, 1996.- 29 с.
6. Васильев В.Н. Здоровье и стресс. – М.: Знание, 1991.- С. 160
7.Горизонтов П.Д. Стресс. Система крови в механизме гомеостаза. Стресс и болезни // Гомеостаз. - М.: Медицина, 1976. - С. 428 – 458.
8. Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Основы общей патологии. Часть I. Основы общей патофизиологии. - СПб.: ЭЛБИ, 1999. - 624 с.
9. Карпищенко А.И. Физиолого-биохимические механизмы предварительной и ускоренной адаптации к сухому жаркому климату и горно-пустынной местности: Автореф. дисс.... докт. мед. наук. СПб., 1995. - 40 с.
10. Ким Р.Е. Зависимость заболеваний новорожденных телят от состояния здоровья коров – матерей. Автореф. дисс. докт. вет. наук.- СПб., 1992. – 37 с
11.Марзанов Н.С. Иммунология и иммунодиагностика овец и коз.- Кишинев: Штиница, 1991.- 236 с.
12.Плященко С.И., Сидоров В.Т. Стрессы у с.х. животных.- М.: Агропромиздат, 1987.- 192 с.
13.Федоров Ф.М. Стресс и система кровообращения.- М.: Медицина, 1990.- 320 с.
14.Эверли Дж. С., Розенфельд Р. Стресс природа и лечение: Пер. с англ.- М.: Медицина, 1985.- 224 с.
15. Method development for correction the immunological status of newborn animals//Трухачев В.И., Дмитриев А.Ф., Скрипкин В.С., Агарков А.В., Агарков Н.В.Research journal of pharmaceutical, biological and chemical sciences. 2017. т. 8. № 1. с. 1852-1856.
16. Гипотеза о внутриутробном инфицировании и механизмах возникновения заболеваний в неонатальный период у сельскохозяйственных животных//Дмитриев А.Ф.Фундаментальные исследования. 2015. № 2-4. С. 719-722.
17.Взаимосвязь совершенства терморегуляторных процессов с иммунобиологическим статусом новорожденных животных//Дмитриев А.Ф., Агарков А.В.Вестник АПК Ставрополья. 2014. № 3 (15). С. 111-115
18.Как защищают животных на Ставрополье//Дмитриев А.Ф.
Ветеринарная жизнь. 2012. № 20. С. 7.
19. Способ поддержания физиологического статуса новорожденных телят Иванов Ю.Г., Дюльгер Г.П., Леонтьев Л.Б., Леонтьева И.Л.
патент на изобретение RUS 2497519 02.05.2012.
20.http://dx.doi.org/10.1016/0006-8993 (92) 91597-8
21.Бузлама В.С. Стресс в промышленном свиноводстве // С.-х. за рубежом. – 1976. - № 8 .- С. 24-26.
22.Взаимодействие иммунной и нервной систем //Абрамов В.В. – Новосибирск: Наука, сиб. отд., 1988. – 166 с.
23.Величковский Б.Т Основы жизнеспособности нации. Введение в социальную биологию человека.- Санкт-Петербург, 2012,- 27 с.
24.Судаков К.М. Системные механизмы эмоционального стресса. – М.: Медицина, 1981. – 229 с.
25.Соколов Е.И., Белова Е.В. Эмоции и патология сердца. – М.: Наука, 1983. – 301 с.
26.Selye H. Stress without distress. New York: Hodder and stoegton, 1974. – 171 p.
27.Юматов Е.А., Судаков К.Е., Тараканов О.П. Способ определения эмоционального стресса и устройство для его осуществления. – Б.И., 1993.
28..Геном: Автобиография вида в 23 главах/ М. Ридли; (пер. с англ. и ред. к.б.н. О.Н. Ревы). – М.: Эксмо, 2008. – 432 с.
29.Хожай Л.И., Шишко Т.Т., Косткин В.Б., Отеллин В.А. Морфологические
изменения в фетальной части аллантоисной плаценты крыс после действия острой гипоксии. // Морфология, 2007, т. 132, № 6, c. 61-64.
30. Шевелев А.В., Оболенский Н.В. Системы горячего водоснабжения с электронагревом воды: области применения в сельском хозяйстве // Вестник НГИЭИ. 2015. № 10 (53). С. 64-70.
31. Шамин А.А., Шамин А.Е. Роль основных факторов в сельскохозяйственных организациях // Вестник НГИЭИ. 2016. № 12 (67). С. 130-138.
32. Отеллин В.А., Хожай Л.И., Ордян Н.Э. Пренатальное стрессирование и развивающийся мозг. Адаптивные механизмы, непосредственные и отсроченные эффекты (Монография) // Издательство «Десятка», СПб, 2007, c. 265.

References


1.A.c. 1718826, USSR, MKI A 61B 10/00. A method for determining the stress sensitivity of newborn animals / Ahmadiev GM; - No. 4762838/15 - 4615 - Declared 22. 11. 89; Opubl. BI, 1992, No. 10.
2.A.c. 173227, USSR, MKI G 01 33/53. Method for determining the compatibility of animals in transplantation / Akhmadiev GM, Amansugurov AG; - No. 4834220/14 - 045815 - Declared 20. 04. 9 0; Opubl. BI, 1992, No. 17.
3.A.c. 1755412, USSR, MKI A 01 K 67/02 G 02 33/49. A method for predicting the viability of newborn lambs / Akhmadiev GM; - No. 4780705/15 - 04615 - Declared 09. 01. 90. Not published.
4.A.c. 1802339, USSR, MKI G 01 33/74. Method for determining the rate of flow of erythrocyte sedimentation / Akhmadiev GM, Gatin GG; - No. 4780347/14 - 24881 - Declared 09. 01. 90; Opubl. BI, 1993, No. 10.
5.Akhmadiev G.M. Assessment and prognosis of the viability of newborn animals depending on postpartum stress. -Avtoret. Diss. Doct. Vet. Nauk.- Kazan, 1996.- 29 p.
6. Vasiliev V.N. Health and stress. - M.: Knowledge, 1991.- P. 160
7. Horizontov PD Stress. The system of blood in the mechanism of homeostasis. Stress and disease // Homeostasis. - M.: Medicine, 1976. - P. 428-445.
8. Zaichik A.Sh., Churilov L.P. Fundamentals of general pathology. Part I. Fundamentals of general pathophysiology. - St. Petersburg: ELBI, 1999. - 624 p.
9. Karpischenko A.I. Physiological and biochemical mechanisms of preliminary and accelerated adaptation to dry hot climate and mountain-desert terrain: Abstract of thesis. Diss .... dokt. Honey. Science. St. Petersburg, 1995. - 40 p.
10. Kim R.E. Dependence of the state of newborn calves on the state of health of cows - mothers. Author's abstract. Diss. Doct. Vet. Nauk, St. Petersburg, 1992. - 37 s
11. N.Marzanov. Immunology and immunodiagnosis of sheep and goats .- Chisinau: Shtinitsa, 1991.- 236 p.
12.Plyashchenko SI, Sidorov V.T. Stress in farming. Animals .- M.: Agropromizdat, 1987. - 192 p.
13. Fedorov F.M. Stress and the circulatory system .- M.: Medicine, 1990.- 320 p.
14. Overley JS, Rosenfeld R. Stress nature and treatment: Trans. From the English-M.: Medicine, 1985.- 224 pp.
15. Development of a method for correcting the immunological status of newborn animals // Trukhachev VI, Dmitriev AF, Skripkin VS, Agarkov AV, Agarkov NV Scientific and Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 2017. Vol. 8. No. 1. p. 1852-1856.
16. The hypothesis of intrauterine infection and the mechanisms of occurrence of diseases in the neonatal period in agricultural animals / / Dmitriev AF Fundamental research. № 2-4. C. 719-722C.
17. The relationship of the perfection of thermoregulatory processes with the immunobiological statuses of newborn animals // Dmitriev AF, Agarkov AV Vestnik of the Agroindustrial Complex of Stavropol. 2014. No. 3 (15). P. 111-115
18.How do animals protect the Stavropol Region? / Dmitriev AF
Veterinary life. 2012. № 20. With. 7.
19. A method for maintaining the physiological status of newborn calves Ivanov Yu.G., Dyulger GP, Leontiev LB, Leont'eva IL
Patent for invention.
20.http: //dx.doi.org/10.1016/0006-8993 (92) 91597-8
21. Buzlama V.S. Stress in industrial pig production // S.-kh. Abroad. - 1976. - No. 8 .- P. 24-26.
22. Interaction of the immune and nervous systems // Abramov V.V. - Novosibirsk: Science, Sib. Otd., 1988. - 166 p.
23.Velichkovsky B.T. Fundamentals of the viability of the nation. Introduction to the social biology of man .- St. Petersburg, 2012, - 27 p.
24. Sudakov K.M. Systemic mechanisms of emotional stress. - M.: Medicine, 1981. - 229 with.
25. Sokolov EI, Belova E.V. Emotions and pathology of the heart. - M.: Science, 1983. - 301 with.
26.Selye H. Stress without distress. New York: Hodder and Staughton, 1974. - 171 p.
27. Yumatov EA, Sudakov KE, Tarakanov OP The way to determine emotional stress and the device for its implementation. - BI, 1993.
28 .. Genome: Autobiography of the species in 23 chapters / M. Ridley; (Translated from English and edited by O.N. Reva, Ph.D.). - M.: Eksmo, 2008. - 432 p.
29.Hozhay LI, Shishko TT, Kostkin VB, Otellin VA Morphological
Changes in the fetal part of the allantoic placenta in rats after acute hypoxia. // Morphology, 2007, v. 132, No. 6, c. 61-64.
30. Shevelev A.V., Obolenskij N.V. Sistemy gorjachego vodosnabzhenija s jelektronagrevom vody: oblasti primenenija v sel'skom hozjajstve // Vestnik NGIJeI. 2015. No 10 (53). P. 64-70.
31. Shamin A.A., Shamin A.E. Rol' osnovnyh faktorov v sel'skohozjajstvennyh organizacijah // Vestnik NGIJeI. 2016. No 12 (67). P. 130-138.
32. Otellin VA, Khozhay LI, Ordyan N.E. Prenatal stress and developing brain. Adaptive mechanisms, immediate and delayed effects (Monograph) // Publishing House "Desyatka", St. Petersburg, 2007, p. 265.

Возврат к списку